Efficacité du traitement, échecs du traitement et sélection de la résistance aux macrolides chez les patients présentant une charge élevée de Mycoplasma genitalium pendant le traitement de l’urétrite masculine par la josamycine | BMC Maladies Infectieuses
Taylor-Robinson D, Jensen JS. Mycoplasme génital: de la chrysalide au papillon multicolore. Clin Microbiol Rev. 2011;24:498–514.
Cohen CR, Manhart LE, Bukusi EA, Astete S, Brunham RC, Holmes KK, et al. Association entre Mycoplasme génital et endométrite aiguë. Lancette. 2002;359:765–6.
Manhart LE, Critchlow CW, Holmes KK, Dutro SM, Eschenbach DA, Stevens CE, et al. Cervicite mucopurulente et Mycoplasme génital. J Infect Dis. 2003;187:650–7.
Cohen CR, Mugo NR, Astete SG, Odondo R, Manhart LE, Kiehlbauch JA, et al. Détection de Mycoplasme génital chez les femmes atteintes de salpingite aiguë diagnostiquée par laparoscopie. Sex Transm Infect. 2005;81:463–6.
Anagrius C, Loré B, Jensen JS. Mycoplasme génital: prévalence, signification clinique et transmission. Sex Transm Infect. 2005;81:458–62.
Bjartling C, Osser S, Persson K. Mycoplasme génital dans la cervicite et la maladie inflammatoire pelvienne chez les femmes dans un service ambulatoire de gynécologie. Suis J Obstet Gynecol. 2012 ;206 : 476–8.
Andersen B, Sokolowski I, Østergaard L, Kjølseth Møller J, Olesen F, Jensen JS. Mycoplasme génital: prévalence et facteurs de risque comportementaux dans la population générale. Sex Transm Infect. 2007 ;83 :237–41.
Oakeshott P, Aghaizu A, Hay P, Reid F, Kerry S, Atherton H, et al. Est Mycoplasme génital chez les femmes, le « New Chlamydia? » Une étude de cohorte prospective communautaire. Clin Infect Dis. 2010;51:1160–6.
Shahmanesh M, Moi H, Lassau F, Janier M. IUSTI/WHO : Directive européenne sur la prise en charge de l’urétrite masculine non gonococcique. Int J MST SIDA. 2009;20:458–64.
Manhart LE, Gillespie CW, Lowens MS, Khosropour CM, Colombara DV, Golden MR, et al. Les schémas thérapeutiques standard pour l’urétrite non gonococcique ont des taux de guérison similaires mais en baisse : un essai contrôlé randomisé. Clin Infect Dis. 2013;56:934–42.
Björnelius E, Anagrius C, Bojs G, Carlberg H, Johannisson G, Johansson E, et al. Traitement antibiotique des symptomatiques Mycoplasme génital infection en Scandinavie: un essai clinique contrôlé. Sex Transm Infect. 2008;84 :72–6.
Mena LA, Mroczkowski TF, Nsuami M, Martin DH. Une comparaison randomisée de l’azithromycine et de la doxycycline pour le traitement de Mycoplasme génital-urétrite positive chez les hommes. Clin Infect Dis. 2009;48:1649–54.
Salado-Rasmussen K, Jensen JS. Mycoplasme génital modèle de test et résistance aux macrolides: une enquête rétrospective à l’échelle nationale danoise. Clin Infect Dis. 2014;59:24–30.
Anagrius C, Lore B, Jensen JS. Traitement de Mycoplasme génital. Observations d’une clinique MST suédoise PLoS ONE. 2013;8:e61481.
Jernberg E, Moghaddam A, Moi H. Azithromycine et moxifloxacine pour la guérison microbiologique de Mycoplasme génital infection : une étude ouverte. Int J MST SIDA. 2008;19:676–9.
Schwebke JR, Rompalo A, Taylor S, Seña AC, Martin DH, Lopez LM, et al. Réévaluer le traitement de l’urétrite non gonococcique : mettre l’accent sur les agents pathogènes émergents – un essai clinique randomisé. Clin Infect Dis. 2011;52:163–70.
Walker J, Fairley CK, Bradshaw CS, Tabrizi SN, Twin J, Chen MY, et al. Mycoplasme génital incidence, charge d’organisme et échec du traitement dans une cohorte de jeunes femmes australiennes. Clin Infect Dis. 2013;56:1094–100.
Jensen JS, Bradshaw CS, Tabrizi SN, Fairley CK, Hamasuna R. Échec du traitement à l’azithromycine dans Mycoplasme génital-les patients positifs atteints d’urétrite non gonococcique sont associés à une résistance induite aux macrolides. Clin Infect Dis. 2008;47:1546–53.
Couldwell DL, Tagg KA, Jeoffreys NJ, Gilbert GL. Échec du traitement par la moxifloxacine chez Mycoplasme génital infections dues à la résistance aux macrolides et aux fluoroquinolones. Int J MST SIDA. 2013;24:822–8.
Manhart LE, Khosropour CM, Gillespie CW, Lowens MA, Golden MR, Totten PA. Résultats du traitement de la persistance Mycoplasme génital UNG associée : preuves d’échecs du traitement par la moxifloxacine. Sex Transm Infect. 2013;89 suppl 1:A29.
Google Scholar
Lignes directrices de pratique clinique pour la prise en charge des patients atteints d’infections sexuellement transmissibles et d’infections de l’appareil reproducteur // Moscou, Russie, 2012. Izdatel’skiy dom Delovoy ekspress. – 112 S (en russe).
Lanjouw E, Ossewaarde JM, Stary A, Boag F, van der Meijden WI. Ligne directrice européenne pour la gestion des Chlamydia trachomatis infections. Int J MST SIDA. 2010;21:729–37.
Krausse R, Schubert S. Activités in vitro des tétracyclines, des macrolides, des fluoroquinolones et de la clindamycine contre Mycoplasme hominis et Ureaplasma ssp. isolé en Allemagne pendant 20 ans. Clin Microbiol Infect. 2010;16:1649–55.
Song T, Ye A, Xie X, Huang J, Ruan Z, Kong Y, et al. Enquête épidémiologique et analyse de la sensibilité aux antimicrobiens des espèces d’ureaplasma et Mycoplasme hominis chez les patients ambulatoires présentant des manifestations génitales. J Clin Pathol. 2014;67:817–20.
Renaudin H, Tully JG, Bebear C. Susceptibilités in vitro de Mycoplasme génital aux antibiotiques. Agents antimicrobiens Chemother. 1992;36:870–2.
Shipitsyna E, Zolotoverkhaya E, Dohn B, Benkovich A, Savicheva A, Sokolovsky E, et al. Première évaluation des tests de réaction en chaîne par polymérase utilisés pour le diagnostic de Mycoplasme génital en Russie. J Eur Acad Dermatol Vénéréol. 2009;23:1164–72.
Shipitsyna E, Zolotoverkhaya E, Agné-Stadling I, Krysanova A, Savicheva A, Sokolovsky E, et al. Première évaluation de six tests d’amplification des acides nucléiques (TAAN) largement utilisés dans le diagnostic de Chlamydia trachomatis en Russie. J Eur Acad Dermatol Vénéréol. 2009;23:268–76.
Shipitsyna E, Zolotoverhaya E, Hjelmevoll SO, Maximova A, Savicheva A, Sokolovsky E, et al. Évaluation de six tests d’amplification des acides nucléiques utilisés pour le diagnostic de Neisseria gonorrhoeae en Russie par rapport à un temps réel international strictement validé parA réaction en chaîne par polymérase pseudogène. J Eur Acad Dermatol Vénéréol. 2009;23:1246–53.
Shipitsyna E, Zolotoverkhaya E, Chen CY, Chi KH, Grigoryev A, Savicheva A, et al. Évaluation des tests de réaction en chaîne par polymérase pour le diagnostic de Trichomonas vaginalis infection en Russie. J Eur Acad Dermatol Vénéréol. 2013;27:e217–23.
Pond MJ, Nori AV, Witney AA, Lopeman RC, Butcher PD, Sadiq ST. Prévalence élevée de la résistance aux antibiotiques Mycoplasme génital dans l’urétrite non gonococcique : la nécessité de tests de routine et l’inadéquation des options de traitement actuelles. Clin Infect Dis. 2014;58:631–7.
Tagg KA, Jeoffreys NJ, Couldwell DL, Donald JA, Gilbert GL. Mutations associées à la résistance aux fluoroquinolones et aux macrolides dans Mycoplasme génital. J Clin Microbiol. 2013;51:2245–9.
Lucier TS, Heitzman K, Liu SK, Hu PC. Mutations de transition dans l’ARNr 23S des isolats résistants à l’érythromycine de Mycoplasme pneumoniae. Agents antimicrobiens Chemother. 1995;39:2770–3.
Furneri PM, Rappazzo G, Musumarra MP, Di Pietro P, Catania LS, Roccasalva LS. Deux nouvelles mutations ponctuelles en A2062 associées à une résistance aux antibiotiques macrolides à 16 chaînons dans des souches mutantes de Mycoplasme hominis. Agents antimicrobiens Chemother. 2001;45:2958–60.
Pereyre S, Guyot C, Renaudin H, Charron A, Bébéar C, Bébéar CM. Sélection et caractérisation in vitro de la résistance aux macrolides et aux antibiotiques apparentés chez Mycoplasme pneumoniae. Agents antimicrobiens Chemother. 2004;48:460–5.
Garza-Ramos G, Xiong L, Zhong P, Mankin A. Site de liaison des antibiotiques macrolides sur le ribosome : une nouvelle mutation de résistance identifie une interaction spécifique des kétolides avec l’ARNr. J Bactériol. 2001;183:6898–907.
Hansen JL, Ippolito JA, Ban N, Nissen P, Moore PB, Steitz TA. Les structures de quatre antibiotiques macrolides liés à la grande sous-unité ribosomale. Cellule Mol. 2002;10:117–28.
Depardieu F, Courvalin P. Mutation dans l’ARNr 23S responsable de la résistance aux macrolides à 16 chaînons et aux streptogramines chez Streptococcus pneumoniae. Agents antimicrobiens Chemother. 2001;45:319–23.
Bissessor M, Tabrizi SN, Twin J, Abdo H, Fairley CK, Chen MY, Vodstrcil LA, Jensen JS, Hocking JS, Garland SM, Bradshaw CS : résistance aux macrolides et échec de l’azithromycine dans un Mycoplasme génital-cohorte infectée et réponse des échecs de l’azithromycine aux schémas antibiotiques alternatifs. Clin Infect Dis 2014 décembre 23. [Epub ahead of print]
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